病毒检测CT值与其致病性之间是否存在必然关系？

红平

各位养猪产业链的同行们，大家好！

自非洲猪瘟之后，qPCR方法快速在养猪产业内得到应用，其检测范围，也逐渐从非洲猪瘟病毒，扩大至蓝耳病毒、PEDV病毒及伪狂犬病毒等绝大部分的病毒或细菌性疾病的检测。

qPCR属于定量PCR检测技术，其检测值以CT值（循环数）表示，即：CT值越低，通常认为样品中病毒载量越高，而CT值越高，则认为样品中的病毒载量越低。通常qPCR进行45个循环，一般血液与组织样品的CT值一般在15-40之间，根据样品中病毒载量与检测体系的差异性而有所调整。

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临床中常见的问题

在临床中，经常会被问及一个问题：是否临床样品的CT值越高，毒力就越弱呢？这个问题从非洲猪瘟、蓝耳病毒及伪狂犬等病毒均有人问及到（如：下图）。

为何兽医或生产人员会将CT值与病毒毒力强弱联系起来呢？

我想大致是因为在非洲猪瘟的检测过程中，大家形成的一种直观感觉。比如：2019年检测到的非洲猪瘟病毒通常是II型的野毒，毒力强，血液样品的CT值通常在20-25之间。而到2020年之后，逐渐出现各种类型的基因单缺失和双缺失病毒感染案例，刚出现临床症状时，唾液或血液样品中的CT值通常在30以上，甚至在35以上。所以给行业从业者的一种印象：似乎毒力越弱，CT值就越高。

看似有一定的道理，但这样理解很容易在临床判断时产生误导。

因为血液样品的CT值与病毒载量有关，而病毒载量除了与病毒自身在体内的复制能力有关外，还与感染猪日龄、感染发生阶段有关。

病毒血症有一定的持续期，通常刚出现病毒血症时，病毒载量低，CT值越高，随后病毒载量逐渐增高，CT值逐渐降低，随后病毒载量又逐渐降低，直到消失。

大日龄后备选留与PRRSV野毒检测

比如：在临床后备母猪选留时，需要对后备母猪的血液或唾液样品进行蓝耳病毒的检测，一旦检测病毒阳性，对于曾经免疫过蓝耳弱毒疫苗的猪群，则需要进行测序，以鉴别是蓝耳疫苗毒还是野毒感染，若是野毒感染，则不能选留。

但测序通常对CT值在30以内的样品的成功率高，而CT值在30以上的样品，很容易测序失败。此时，很多兽医就想当然认为，CT值高于30，应该是蓝耳疫苗毒，故即使测序失败，依然坚持将后备母猪引种入群。但入群后不久，就会导致基础群蓝耳病大爆发。

这样的临床案例很多。对于蓝耳病，并非是血液样品的CT值越高，PRRSV的毒力就越低，更不能认为CT值＞30的，都不是野毒感染。

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如何确定病毒毒力？可以依照毒力基因吗？

这个问题也很有意思。

在临床上，通常会有人问：蓝耳的欧洲毒株是否都是弱毒株？我的观点是：绝大部分的欧洲毒株的临床危害较小，所以欧洲的蓝耳病感染的经济损失较美国也小些。但欧洲毒株也有毒力强的毒株，比如2023年西班牙发生了大规模的蓝耳病，导致了全国上市育肥猪数量下降了10%，母猪也可以发生死亡。

还有一个问题：是否可以在测序后，根据经典毒株、高致病性毒株、NADC30、NADC34等这些基因型分类，预测蓝耳病毒在猪群造成的经济损失呢？

我的答案是不能。高致病性毒株是2008年的分类方法，但并不代表今天感染HP-PRRSV的经济损失都很大。

另外，即使在同一个母猪群，不同生产条线，同时感染了同一个蓝耳病毒株（比如：NADC30），因为母猪群所处的妊娠阶段、猪群的免疫状态及猪群环境控制管理等不同，也会导致不同的经济损失。

同样都是NADC30毒株，但全基因序列的同源性有时差别很大，且致病性差别也很大，还不一定存在交叉保护力。所以，不能简单根据病毒株的基因分类，就判断某个病毒株的毒力是否强，是否会导致严重的经济损失。

预测病毒毒力的方法，就是攻毒试验，根据感染猪群的临床损失来判断。有些毒力基因的缺失，的确会极大降低某个病毒的临床危害，但具体毒力多强，其经济损失多大，依然要依靠动物试验来验证。

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总结

我认为：病毒检测CT值与其致病性之间没有必然关系。

对于某些弱毒株（尤其是商品化疫苗，比如：PRRSV），其血液中病毒血症的确要低很多，病毒血症持续期也会更短些。对于毒力强的毒株，通常在体内病毒复制能力更强，会出现更高的病毒载量。但当毒力强的病毒，位于感染早期与晚期时，CT值也可能很高，血液中病毒载量低。但不能根据临床血液样品的CT值，就简单给予结论。甚至盲目的判断，CT值高的，都是疫苗毒株感染。否则，在临床诊疗上就非常危险。

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审校｜韩宏宇

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红平 LV8